产地 | 国产 |
品牌 | 谷研 |
货号 | GOY-SH144-B |
用途 | 仅供科研实验 |
英文名称 | AA |
包装规格 | 50管/48样 |
纯度 | % |
CAS编号 | |
别名 | 氨基酸(AA)含量测试盒 |
分子式 | |
是否进口 | 否 |
氨基酸(AA)含量测试盒可见分光光度法
商品属性:
检测方法 |
规格 |
货号 |
可见分光光度法 |
50管/48样 |
GOY-SH144-B |
测定意义:
肝脏是氨基酸代谢的主要器官,故尿中氨基酸的变化最能反应肝、肾的生理状态。另
外,氨基酸还能反应灼伤、伤寒等方面情况。植物体内氨基酸含量对研究植物在不同条件下
及不同时期氮代谢变化、植物对氮素的吸收、运输、同化及营养状况等有重要意义。
测定原理:
氨基酸的 α-氨基可与水合茚三酮反应,产生蓝紫色化合物,在 570 nm 有特征吸收峰;通过
测定 570 nm 吸光度,来计算氨基酸含量。自备仪器和用品:台式离心机、可见分光光度计、水浴锅、1mL 玻璃比色皿、可调式移液枪、研钵、无水乙
醇、冰和蒸馏水。
试剂组成和配制:
试剂一:液体 60 mL×1 瓶,4℃保存。
试剂二:液体 100 mL×1 瓶,4℃保存。
试剂三:粉剂×1 瓶(棕色),4℃避光保存。临用前加入 2 mL 无水乙醇,盖紧后充分混匀,
再加入 28 mL 试剂二混匀,避光保存。
试剂四:粉剂×1 瓶,4℃避光保存。临用前加 5 mL 试剂二,充分溶解。
酶液提取:
1. 按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入
1mL 试剂一)进行室温匀浆,8000g,4℃离心 10min,取 200μL 上清转移到 1.5 mL EP
管中,加入 200μL 试剂二盖紧后(防止水分散失)置于沸水浴 15 min,冷却至室温后
待测。
2. 细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量
(104个):试剂一体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL
试剂?ō?
测定操作:
1. 分光光度计预热 30 min,调节波长到 570 nm,蒸馏水调零。
2. 取 EP 管,加入 50μL 待测液,500μL 试剂二,500μL 试剂三和 50μL 试剂四,混匀后盖
紧瓶盖(防止水分散失),置于沸水浴中保温 15 min,冷却后反复颠倒 EP 管数次,于 570nm
测定吸光值,记为 A 测定管。显色后务必在 30min 内测完。
计算公式:
氨基酸含量计算公式:
使用比色皿测定的计算公式如下
标准曲线:y = 0.0054x + 0.0737 R2 = 0.9994 x:亮氨酸标准品浓度(μg/mL)
y:吸光值 A
(1)按蛋白浓度计算
氨基酸含量(μg /mg prot)=185.2×(A 测定-0.0737)×V 样×(V 样总 ÷V 样)×2÷Cpr
=370.4×(A 测定-0.0737)÷Cpr
(2)按样本质量计算
氨基酸含量(μg /g 鲜重)=185.2×(A 测定-0.0737)×V 样×(V 样总 ÷V 样)×2÷W
=370.4×(A 测定-0.0737)÷W
(3)按细胞数量计算
氨基酸含量(μg /104 cell)=185.2×(A 测定-0.0737)×V 样×(V 样总 ÷V 样)×2÷细胞数量
=370.4×(A 测定-0.0737)÷细胞数量
(4)按照液体体积计算
氨基酸含量(μg /mL)=185.2×(A 测定-0.0737)×2
=370.4×(A 测定-0.0737)
W:样品质量,g;V 样:反应体系中加入样品提取液体积,0.05 mL;V 样总:样品提取液
总体积,1mL;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL。
注意事项:
1. 试剂盒中试剂三、试剂四均需临用前配制,且避光保存,配制好未使用完的 4℃保存且 3
天内使用完毕。
2. 为保证实验结果的准确性,需先取 1-2 个样做预实验,如果测定的吸光值过高(高于 2.5)
或者检测时吸光值下降很快,用试剂二稀释后再测定。
3. 脯氨酸和羟脯氨酸与茚三酮反应在 570nm 处无吸收峰,因此,570nm 处测定结果不含这
两种氨基酸的量
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